MLO-Y4 MLOY4 (小鼠骨樣細胞)操作步驟
在完成MLO-Y4細胞的復蘇和傳代后,接下來的實驗操作需嚴格遵循無菌原則,以確保細胞的穩定性和實驗結果的可靠性。
1. 細胞接種與培養:
將傳代后的MLO-Y4細胞以適當密度(通常為5×10? cells/cm2)接種于預涂膠原的培養皿中,加入含10%胎牛血清(FBS)和1%α-MEM培養基,置于37℃、5% CO?的培養箱中靜置培養。每隔48小時更換新鮮培養基,避免代謝廢物積累影響細胞狀態。
2. 細胞形態觀察:
MLO-Y4細胞在健康狀態下呈星形或多突觸狀,若發現細胞變圓或脫落增多,可能提示培養條件異常(如pH失衡或污染)。此時需及時調整培養基或重新檢測無菌環境。
3. 實驗干預處理:
根據研究目的,可對細胞施加力學刺激(如流體剪切力)、化學誘導或基因轉染。例如,在研究成骨分化時,可添加50 μg/mL抗壞血酸,連續培養14天后通過堿性磷酸酶(ALP)染色評估分化效果。
4. 數據收集與分析:
通過CCK-8檢測增殖活性,或采用qPCR、Western blot檢測成骨相關基因(如Runx2、OCN)的表達。若需觀察細胞間通訊,可進行鈣成像或縫隙連接功能實驗。
注意事項:
- 膠原包被能顯著增強細胞貼壁率,建議提前24小時以0.1 mg/mL膠原溶液處理培養皿。
- 避免頻繁晃動培養瓶,以防細胞突觸損傷。
- 凍存時使用含10% DMSO的凍存液,程序降溫后轉入液氮長期保存。
通過上述步驟,可確保MLO-Y4細胞在實驗中保持最佳狀態,為骨代謝機制研究提供可靠模型。后續實驗可進一步結合共培養體系或體內移植,拓展其在骨組織工程中的應用。


